Опыт на кролике. Сначала просматривают оба уха кролика в проходящем свете и обращают внимание-на окраску кожи, расположение кровеносных сосудов. Затем одно ухо начинают механически раздражать путем надавливания или растирания между пальцами. Сравнивая данное ухо с контрольным, можно наблюдать внешние признаки гиперемии. Артериальную гиперемию вызывают и воздействием высокой температуры. Например, если ухо кролика погрузить в теплую воду (температура 40—50°), то после 5—10 мин оно становится красным.

Кровь при артериальном кровотечении ярко-красного цвета (алая), вытекает пульсирующей струей. Кровотечение останавливают наложением кровоостанавливающего пинцета или перетягивают лигатурой. Вену перерезают выше подведенной под нее нитки. Кровь из вены вытекает ровной струей. Она темно-красного цвета. Кровотечение уменьшается при надавливании на вену ниже ее перерезки. Окончательно кровотечение останавливают наложением на сосуд лигатуры.

Внешне перерожденный орган увеличен в объеме, набухший, с притуплёнными краями и напряженной капсулой. Консистенция его более мягкая, дряблая. Цвет органа и ткани различный, но чаще всего бледно-серый. Печень серо-коричневая, глинистого цвета. На разрезе органа отсутствуют нормальный блеск и рисунок. Поверхность разреза мутная, тусклого вида. Важное значение имеют гистологические исследования. При микроскопии гистологического среза из перерожденной ткани отмечают увеличение объема й мутноватость цитоплазмы перерожденных клеток.

Некроз (омертвение). Основные признаки наступающего некроза — прекращение обмена в клетках. Орган теряет чувствительность, становится холодным. С прекращением обмена начинаются процессы распада белков цитоплазмы и ядра. Ядро сморщивается (пикноз), разрывается и распадается на части (рексис) или растворяется (лизис). В конечном счете нарушается строение клеток, а участок ткани превращается в бесструктурную массу (некротический детрит), состоящую из продуктов распада белка, жиров и других соединений.

Осмотр —основной метод клинического об»следования как отдельного больного, так и группы ж, и потных. При массовом обследовании на фоне здорово» г° поголовья осмотр позволяет выявить больных, котор ые обычно отстают от стада, плохо поедают корм, 0тГ1ичаются своим поведением, низкой продуктивностью, и<с'ГОШ'ены' угнетены и т. д. Эти животные подлежат инди в-идуаль-ному обследованию, при котором используют Н^РУЖНЫЙ и внутренний осмотр.

Антибиотики; пенициллин, стрептомицин, симтомицин, биомицин и др. Задание 1. Ознакомиться с препаратами по коллекции. 2. Приготовить раствор пенициллина с новокаином для инъекции. Для приготовления раствора пенициллина во флаконе надо иметь две простерилизованные иглы, одной прокалывают пробку, другой делают инъекцию. В шприц набирают 5 мл 0,5%-ного раствора новокаина, с помощью иглы его вводят во флакон с пенициллином, встряхивают и наблюдают растворение антибиотика.

Задание. 1. Приготовить стерильный раствор. Берут хлорида натрия 20,0 и воды до 200 мл. Хлорид натрия растворяют в 150 мл воды, пропускают через гладкий бумажный фильтр, последний промывают водой до' получения 200 мл раствора. Раствор переливают в колбу (флакон) с притертой или резиновой пробкой и стерилизуют 30 мин в кипящей водяной бане, охлаждают, закрывают' пробку пергаментной бумагой и завязывают ниткой.

Для этого нужны жидкое масло, слизь и вода (касторовое масло 30,0; гуммиарабик 15, 0; вода 300 мл). Гуммиарабик размельчают в ступке, прибавляют касторовое масло и растирают пестиком до получения однородной массы, добавляют 40 мл воды, тщательным растиранием получают сметанообразную жидкость, которая при дальнейшем добавлении воды превращается в жидкость, напоминающую молоко. Эту смесь фильтруют через двойной слой марли.

Для введения болюса используют болюсодаватель или корнцанг. Животному открывают рот обычным приемом, рукой захватывают и оттягивают язык, болюсодавателем забрасывают болюс на корень языка и тотчас отпускают язык. Лекарственные кашки задают животным с помощью шпателя или деревянной лопаточки. Открывают животному ротовую полость, извлекают язык, шпателем наносят кашку на корень языка, последний быстро отпускают, а в ротовую полость заливают немного воды из спринцовки или бутылки.

). Для отдельных операций используют инструменты специального назначения, например для кастрации животных — кастрационные щипцы Занда, эмаскуляторы, металлические и деревянные лещетки и др. Перевязочный материал. Различают основной перевязочный материал, (марля,' вата лигнин, бинты -марлевые и холвдевые) и вспомогательный (пакля, торфяной мох, целлофан, клеенка, байка, фланель и др.). Марлю выпускают беленую (химически обезжиренную) и серую (необезжиренную).

Руки можно мыть теплым 0,5%-ным раствором нашатырного спирта в тазике в течение 5 мин. Руки дезинфицируют винным спиртом, а подногтевые пространства и складки кожи на суставах смазывают настойкой йода. Надежная дезинфекция обеспечивается после протирания рук в течение 2 мин 5%-ным спиртовым раствором танина. При операциях иногда пользуются стерильными хирургическими перчатками, однако это не исключает подготовку и дезинфекцию рук.

Процесс подковывания лошадей включает, ряд операций, которые выполняются в следующем порядке. 1. Осмотр перед подковыванием в спокойном состоянии животного проводится для определения состояния копыт, а также характера постановки конечностей. Осмотр лошадей в движении необходим для выявления хромоты. 2. Расковка, или удаление старой подковы, производится при помощи обсечки, ковочного молотка и ковочных клещей.

Семенники отрезают ниже лигатуры, отступя от нее на 1— 2 см. Перевязанная культя семенного канатика подтягивается кверху и скрывается в глубине пахового канала. Кастрационную рану припудривают порошком стрептоцида или йодоформа. Края кожной раны обрабатывают настойкой йода. При открытом способе разрезают всю стенку мошонки, в том числе и общую влагалищную оболочку. Затем ножницами или скальпелем перерезают влагалищную связку.

.Водопой не ограничивают. На 2—3-й день животных можно выпасать вблизи фермы на хороших пастбищах. Бараны и бычки, кастрированные перкутанным способом, в особом уходе не нуждаются. Кастрированных жеребцов выдерживают на привязи в станках. Начиная со вторых суток им назначают моцион по 1 ч в сутки два раза. Это предупреждает появление отека мошонки и другие послекастрационные осложнения. (О последних см.

камфорное масло и др. Корова, лошадь, кролик и др. Методика проведения занятия. Студенты проводят обследование животных, заостряют внимание на общих признаках расстройства кровообращения в организме — быструю утомляемость животного, нарушение дыхания, изменение цвета слизистых оболочек, застой крови в венозных сосудах, явлениях отека и др. Приемы исследования пульса, аускультации, осмотра, пальпации, перкуссии сердечной области и другие методы исследования системы кровообращения у животных студенты отрабатывают под руководством преподавателя.

При воспалении легких, бронхите и плеврите большую пользу приносят горчичники. Цель занятия. Ознакомить студентов с порядком и методами обследования системы пищеварения у животных. В процессе работы необходимо освоить некоторые приемы оказания лечебной помощи больным Матертиалы, оборудование, животные. Зевники для животных разных видов, пищеводный зонд для крупного рогатого скота, носопищеводный зонд для лошадей, клизменная кружка Эсмарха, троакар, зубной рашпель, резиновая бутылка для лекарственных растворов, перкуссионные молоточки с.

В процессе работы преподаватель отмечает осведомленность студентов в вопросах диагностики и лечения, прочность усвоения ими навыков по оказанию первой неотложной помощи больным животным. Порядок и методы обследования органов пищеварения. Обследование органов пищеварения начинают с определения общего состояния животного. Для этого применяют основные методы клинического исследования— осмотр, пальпацию, перкуссию,- аускультацию и термометрию.

Путем надавливания на баллон регулируют поступление жидкости и интенсивность промывания. Для промывания можно пользоваться воронкой с резиновой трубкой. У мелких животных (овец, ягнят, поросят) ротовую полость удобно промывать с помощью мягкой губки. Смазывание слизистой оболочки ротовой полости проводят при стоматитах. Ватный тампон захватывают корнцангом, смачивают дезинфицирующим веществом (йод-глицерин и др.

Правую руку вводят вращательными движениями в препуциальный мешок, средним и указательным пальцами захватывают пенис выше его головки. Большим пальцем руки дополнительно фиксируют головку и медленно, равномерно, настойчиво тянут пенис из крайней плоти наружу. Затем берут его в левую руку, а освободившейся правой рукой после дезинфекции устья уретры вводят катетер. Последний продвигают свободно до седалищной вырезки.

Инфекционные болезни - К инфекционным относят заболевания, возбудителями которых являются паразиты растительного происхождения (бактерии, бациллы, фильтрующиеся вирусы). Паразиты животного происхождения (одноклеточные — простейшие, паразитические черви — гельминты, паукообразные и насекомые) являются возбудителями инвазионных болезней. Возбудители любого происхождения обладают специфическими особенностями (морфологическими, анатомическими, биологическими, физиологическими и биохимическими).

Знакомятся с лабораторной аппаратурой. По возможности студенты должны готовить питательные среды, определять их качество и производить Посевы. Во время занятий преподаватель объясняет правила работы с инфицированным материалам и контролирует качество выполнения задания. После занятия каждый студент приводит в порядок свое рабочее место. Серологический метод . заключается в выявлении больных животных с помощью реакций, основанных на обнаружении в сыворотке крови специфических антител или установлении в исследуемом материале с помощью специфической сыворотки соответствующего антигена.

При отрицательной реакции такого кольца не образуется. Реакция связывания комплемента (РСК). Эту реакцию используют для диагностики сапа, бруцеллеза, случной болезни-лошадей и др. Основана она на выявлении в сыворотке крови исследуемого животного специфических антител (лизинов), обладающих способностью растворять микробы (бактериолизины) и эритроциты крови (гемолизины). Для проведения реакции требуется ряд компонентов: сыворотка крови исследуемого животного, антиген —-убитая культура возбудителя, комплемент — сыворотка крови морской свинки, взвесь эритроцитов барана, разведенная физиологическим-раствором (1:40), и гемолитическая сыворотка — сыворотка крови кролика, гипе-.

3. Извлечение органов брюшной полости, шеи и грудной полости. 4. Исследование извлеченных органов (шеи, грудной и брюшной полостей). 5. Вскрытие черепа, извлечение и исследование головного мозга. 6. Вскрытие и исследование придаточных полостей черепа. 7. Исследование конечностей и суставов. 8. Вскрытие позвоночного канала и извлечение спинного мозга. 9. Патологоанатомический диагноз. 10. Заключение.

пузырем (от мелких животных печень посылают целиком); одну почку; 0,5 л мочи; 0,5 кг скелетной мускулатуры. Для гистологического исследования посылают кусочки ткани размером 1X3X5 см из следующих.органов: печени, почки, сердца, легкого, селезенки, языка, пищевода, желудка, тонкого отдела кишечника, скелетной мускулатуры, лимфатических узлов, половину головного мозга"в стерильной банке. При подозрении на кормовые - отравления в лабораторию направляют корма и различный материал от больных животных: мочу, кал, выделения рвоты, содержимое желудка и др.

Для этого применяют механический, химический, бактериологический и биологический методы. Для механической борьбы с крысами используют капканы (рис. 50), куда кладут различные приманки (ветчину, •поджаренное сало, сыр, копченую рыбу и другие продукты). Перед употреблением капкан тщательно моют горячей водой с содой. как как некоторые химические вещества ядовиты для cog Века- то при обращении с ними необходимо строго Данные мероприятия направлены на выявление и ликвидацию источника инфекции, фактора передачи ее и повышение устойчивости животных к заразному заболеванию.

Так как сыворотку обычно применяют в больших объемах, то при подкожной инъекции ее следует вводить в нескольких местах тела животного. Условия и требования при проведении прививок. Перед прививками проводят клинический осмотр и термометрию всех животных хозяйства, подлежащих иммунизации. В зависимости от этих данных животных делят на группы. Если в хозяйстве необходимо проводить активную иммунизацию, в группы включают следующих животных: а) вполне здоровых, подлежащих активной иммунизации; б) животных слабых или молодых, которым нельзя вводить вакцину (им инъецируют сыворотку) ; в) животных, подозреваемых в заболевании и температурящих (им вводят сыворотку в лечебных дозах) .

Однако путем микроскопического исследования крови су-ауру можно исключить. Цель занятия. Ознакомиться со средствами и техникой борьбы с .пастбищными клещами как .переносчиками пироплазмидозов, устройством противокле-щевых ванн, приготовлением различных лекарственных форм: дустов, линиментов, мазей, суспензий, эмульсий и растворов (гексахлорана, мышьяковистокислого натрия). Материалы и оборудование.

Методика проведения занятия. Данное задание студенты выполняют в учебном хозяйстве под руководством преподавателя. Студенты сами наблюдают за состоянием здоровья животных и учитывают результаты проведенных мероприятий. Для лечения пироплазмидозов применяют средства, направленные на регулирование и восстановление нарушенных функций и систем организма больного животного (симптоматическое лечение), а также средства, действующие против возбудителей, паразитирующих в теле больного животного.

Трипансинь обладает лечебным и профилактическим действием при пироплазмозе лошадей, крупного и мелкого рогатого скота, а также собак. Профилактическое действие препарата продолжается 15. дней и связано с медленным выделением его из организма. Назначают трипансинь в виде 1%-ного стерильного раствора на физиологическом растворе внутривенно. Для лошадей доза трипансини 0,005 на 1 кг массы животного. Истощенным животным общую дозу препарата делят на два приема с перерывом в 24 ч, избегая возможных осложнений.

И. Рон-жиной. При вскрытии павшего животного от ценуроза в мозге находят один, реже два и более денуров. Если пузырь располагается на поверхности мозга, то черепные кости могут утончаться и атрофироваться. Зхинококкоз животных. Гельминтоз млекопитающих животных и человека. Вызывается ларвальной стадией (однокамерным эхинококковым пузырем) цестоды эхи-нококкус гранулозус, представляющий'собой пузырь, наполненный жидкостью.

Широкое распространение имеют аскаридоз свиней, параскаридоз лошадей, аскаридиоз Кур и др. Аскаридоз свиней вызывается нематодой аскарис суум, паразитирующей в тонком отделе кишечника. Болезнь встречается повсеместно. Поросята заражаются уже с первых дней жизни в течение всего года. Аскаридоз более резко проявляется у поросят в возрасте от 2 до 6 месяцев, в это время они тяжело переносят заболевание.

При вскрытии трупа в кишечнике находят половозрелых паразитов. В отдельных случаях параскариды могут вызвать закупорку кишечника и даже разрыв его стенки. В легких при массовой миграции личинок отмечают массовые кровоизлияния. Аскаридиоз. кур вызывается нематодой аскарис гал-ли. Это самая крупная нематода кур, желтовато-белого цвета, локализуется в тонком отделе кишечника. Болеют преимущественно цыплята.

4. Метод Вайда. На часовое стекло или чашку Петри е теплой водой (40—45°) помещают 3—4 шарика свежих фекалий овцы или козы. Через 15 мин фекалии из чашки пинцетом удаляют, а жидкость в чашке или на часовом стекле без" центрифугирования исследуют' на наличие личинок при малом увеличении микроскопа. Метод культивирования личинок. В пищеварительном тракте животных паразитируют гельминты различных родов и видов из подотряда стронгилята.

После дегельминтизации птицу не выпускают из помещения в течение 2 суток. Выделившиеся за это время фекалии вместе с аскаридиями убирают и биотермически обеззараживают. Птицу переводят на новые выгулы; е) четыреххлористый углерод задают через рот с помощью тонкой резиновой трубки, введенной в пищевод, или из шприца непосредственно в зоб; дозы — в возрасте 2—10 месяцев — 1 мл, взрослым курам — 2—5 мл.

Для дегельминтизации крупного рогатого скота применяют более концентрированный раствор йода (1 : 1,5: 1000) из расчета 0,6 мл на 1 кг массы животного. Температура раствора должна быть от 30 до 37°. Овец дегельминтизируют в спинно-бо-ковом положении на специальном станке, установленном под углом 25—30°. Препарат вводят двукратно, сначала в одно легкое, а через сутки — в другое. Для профилактической дегельминтизации овец раствор можно вводить одновременно, сначала в одно легкое, а затем, повернув животное на другой бок, — в другое.

Ознакомление с антгельминтиками и приготовлением нужных форм для применения их в борьбе с различными гельминтозами животных проводится в лаборатории кафедры. Режим дегельминтизации и технику введения препаратов в организм животных, а также биотермическое обеззараживание навоза студенты осваивают в учебном хозяйстве под руководством преподавателя. Задание они выполняют, исходя из плана противогельмин-тозных мероприятий в хозяйстве.

В связи с тем, что паукообразные и насекомые относятся к типу членистоногих (артропода), студенты хотя бы в общих чертах должны ознакомиться с морфологией и анатомией их и уяснить, какие приз- наки строения объединяют насекомых и паукообразных, составляющих два самостоятельных класса типа членистоногих. Тип членистоногих животных характеризуется тем, что тело их, облеченное хитинизированной кутикулой, разделяется на сегменты, снабженные парными членистыми конечностями.

В период интенсивного лёта и нападения кровососов на животных необходимо через каждые 5—10 дней проводить массовые обработки животных гексахлораном в форме 5—10%-ных дустов или 1%-ной эмульсией креолина, содержащей 0,25% гексахлорана. Летом один раз в 5 дней места выплода мух обрабатывают 5%-ной водной эмульсией концентрата гексахлорана на креолиновой основе (из расчета 0,2—0,3 л эмульсии на 1 м 2).

.. Ознакомить студентов по макро-и микроскопическим препаратам с морфологией, строением и биологией насекомых как возбудителей и переносчиков заболеваний сельскохозяйственных животных. В практике препараты обычно используют в виде дустов или аэрозолей. Последние готовят в определенной дозе из расчета содержания в препарате активно действующих веществ (АДВ). Если требуется продлить токсическое действие препарата на паразитов, то к нему добавляют пролонгаторы, которые задерживают его разрушение или испаряемость.

При разведении с водой получается стойкая эмульсия от молочного до светло-кофейного цвета. В щелочной среде АДВ быстро разрушается. Препарат рекомендуют для борьбы с иксодовыми клещами на молодняке и недойных коровах, с вольфартиозом овец и саркоптозом свиней, а также для обработки помещений в целях уничтожения в них насекомых и клещей. Животных можно направлять на убой через 60 дней после обработки трихлорметафосом-3.

Креолин — изготовляют на основе каменноугольных масел, канифольного мыла и щелочи. Из-за наличия каменноугольных масел креолин содержит канцерогенные, вещества. Поэтому его применение для обработки животных нежелательно. Циодрин — прозрачное вещество соломенно-желтого цвета со слабым эфирным запахом, очень плохо растворяется в воде, смешивается в разных соотношениях со спиртом и эфиром. Препарат изготовляется в виде концентратов эмульсий, содержащих 25, 40, 47 и 50% АДВ, аэрозолей в упаковках или баллонах («Акродекс» и др.

Истинная скорость в осевой части капилляров равна 0,5—0,8 мм в секунду. 7. При капилляроскопии отмечается спонтанное открытие и закрытие некоторых капилляров. Подобное закрытие сосудов не следует смешивать с их спазмом, возникающим в результате чрезмерного натяжения рассматриваемой ткани, подсыхания ее и т. д. (К рог). 8. Для наблюдений надо брать слабо окрашенных лягушек, так как пигментные клетки маскируют капилляры и делают их плохо видимыми.

Вода наполняет предсердие, желудочек и, выйдя по легочной артерии в вертикальную трубку, устанавливается в ней на том же уровне, что и в воронке (закон сообщающихся сосудов). 4. Сжимают руками стенку правого желудочка и затем отпускают ее. Отмечают, что жидкость, поднявшись в вертикальной трубке до определенного уровня, остается на нем и после расслабления стенки желудочка. Объясняется это тем, что полулунные клапаны не позволяют ей возвратиться в полость желудочка.

Во втором случае к месту сердечного толчка выслушивающий прикладывает ухо. Приборы, материалы и объекты исследования. Ножницы, пинцет, зонд, дощечка, булавки, нитки, лягушка. Задача. В венозном синусе сердца лягушки находится первичный автоматический центр, в котором возникают импульсы, определяющие ритм сокращений отделов сердца. На границе между предсердиями и желудочком находится вторичный центр — атриовентрикулярный, — обладающий меньшей авто-матией, чем первичный.

Разрушают головной и спинной мозг лягушки. Животное прикалывают брюшком кверху к дощечке. Обнажают сердце. Перикард тщательно и осторожно удаляют. Берут на лигатуру сердечную уздечку. 2. Сердце приподнимают за уздечку и переворачивают задней поверхностью кверху. Венозный синус отделяют от окружающих тканей. 3. Подводят под сердце лигатуру на границе между венозным синусом и предсердиями (белая поло-Рис.

Кардиографический пинцет Марея, индукционный санный аппарат, два аккумулятора, игольчатый ртутный ключ, обычный электроключ, два электроотметчика, кимограф с медленно-вращающимся барабаном, три штатива, кольцо и три держателя к штативу,-ножницы, пинцет, зонд, дощечка, булавки, лягушка. Задача. Сердечная мышца обладает рядом характерных-физиологических особенностей, отличающих ее от скелетных поперечно-полосатых мышц.

О последствиях судят по записи сокращений сердца на барабане кимографа. Убеждаются в отсутствии какого-либо эффекта. 3. Раздражают желудочек в начале, в середине и в конце диастолы. Наблюдают появление экстрасистолы и вслед за ней компенсаторной паузы (рис. 64). 5. Определяют время компенсаторной паузы. 6. Устанавливают зависимость между длительностью компенсаторной паузы и моментом диастолы, в который нанесено раздражение (пауза, тем длиннее, чем раньше нанесено раздражение) .

Идя от средней линии челюсти назад (спереди языкоглоточный, а за ним подъязычный), они образуют угол, открывающийся наружу. В этом углу и проходит сосудисто-нервный пучок, состоящий из гортанного нерва, сонной артерии, яремной вены, блуждающего (п. vagus) и симпатического нервов (п. sympa-thicus). Два последних образуют у лягушки единый нервный 'стволик — п. vagosympathicus (рис. 65). Подтянув сонную артерию кверху стеклянным крючком, обнаруживают под ней этот стволик.

Ход опыта. 1. Записывают кардиограмму и определяют ритм работы сердца в норме. 2. Раздражают п. vagosympathicus слабым индукционным током в течение 10 секунд. Наблюдают замедление сердечных сокращений. 3. Увеличивают силу тока и раздражают нерв в течение 5 секунд. Отмечают полную остановку сердца сразу же после включения более сильного тока. 4. Наблюдают за изменениями в сердечной деятельности после возобновления сокращений сердца.

Определяют по секундомеру латентный период реакции и длительность остановки сердца. Работа 19. Исследование нервных путей, по которым проходит возбуждение, вызывающее рефлекс Гольца Приборы, материалы и объекты исследования. Ножницы большие и глазные, пинцет с загнутыми концами, скальпель, пробковая дощечка, булавка, 0,6% раствор NaCl, вата, секундомер, индукционный аппарат, электроключ, электроды, провода, нитки, аккумулятор, зонд, лягушки.